Одновременное прямое укоренение ex vitro и адаптация микропобегов жимолости синей (Lonicera caerulea L. var. kamtschatica)


https://doi.org/10.29235/1817-7204-2020-58-3-298-310

Полный текст:


Аннотация

Прямое укоренение растений-регенерантов в условиях ex vitro имеет большое значение в сельскохозяйственной биотехнологии, так как ведет к ускорению процесса микроразмножения за счет исключения этапа укоренения in vitro и сокращению затрат на получение оздоровленного посадочного материала плодовых и ягодных культур. Установлена возможность применения прямого укоренения ex vitro и адаптации микропобегов жимолости синей в одной стадии без стадии укоренения in vitro. Для укоренения ex vitro и адаптации микропобегов жимолости необходимо использовать нестерильный субстрат – мох Sphagnum L. с поверхностным слоем (0,5 см) торфа. Выход укорененных микропобегов на этом субстрате составляет 72–84 % в летне-осенний период и не менее 60 % в зимний период. Термическая обработка поверхностного слоя торфа и использование водных растворов ИМК на стадии укоренения ex vitro экономически будут оправданы при размножении отдельных сортов, характеризующихся низкой пролиферационной активностью в культуре in vitro или низкой ризогенной активностью ex vitro, а также селекционных новинок, требующих быстрого размножения и получения большого количества посадочного материал. Термическая обработка поверхностного слоя торфа позволяет увеличить выход укоренившихся микропобегов сорта Волхова на 10,7 %, сорта Крупноплодная – на 13,2 %, сорта Павловская – на 3,8 % при укоренении в весенний период. Применение водных растворов ИМК увеличивает выход укорененных растений на 6,2–6,7 % у сортов Восторг и Крупноплодная при укоренении в летний период. Проведение одного черенкования укоренившихся ex vitro микропобегов и в последующем черенкование их черенков можно использовать для увеличения выхода товарной продукции сортов жимолости синей. Одновременное прямое укоренение ex vitro и адаптация микропобегов жимолости синей с последующим черенкованием ex vitro повышает рентабельность производства в 3,5 и 12,9 раза по сравнению с классическим способом клонального микроразмножения жимолости синей.


Об авторе

Е. В. Колбанова
Институт плодоводства, Национальная академия наук Беларуси
Беларусь

Колбанова Елена Вячеславовна – кандидат биологических наук, доцент, заведующая лабораторией диагностики отдела биотехнологии

ул. Ковалева, 2, 223013 аг. Самохваловичи, Минский район



Список литературы

1. Sedlák, J. In vitro propagation of blue honeysuckle / J. Sedlák, F. Paprštein // Horticultural Science. – 2007. – Vol. 34, №4. – P. 129–131. https://doi.org/10.17221/1871-hortsci

2. Сорокопудов, В.Н. Сорта съедобной жимолости: биология и основы культивирования / В.Н. Сорокопудов, А.Г. Куклина, М.Т. Упадышев. – М. : ФГБНУ ВСТИСП, 2018. – 159 с.

3. Marcelina, K-M. Propagation of Blue Honeysuckles (Lonicera caerulea L.) in in vitro culture / K-M. Marcelina, O. Ireneusz // J. of Basic & Appl. Sciences. – 2014. – Vol. 10. – P. 164–169. https://doi.org/10.6000/1927-5129.2014.10.22

4. Макаров, С.С. Влияние состава питательной среды на клональное микроразмножение жимолости съедобной / С.С. Макаров, Е.А. Калашникова // Плодоводство и ягодоводство России : сб. науч. работ / Всерос. селекц.-технол. ин-т садоводства и питомниководства. – М., 2017. – Т. 49. – C. 217–222.

5. Dziedzic, E. Propagation of blue honeysuckle (Lonicera caerulea var. kamtschatica Pojark.) in in vitro culture / E. Dziedzic // J. of Fruit a. Ornamental Plant Research. – 2008. – Vol. 16. – P. 93–100.

6. In vitro propagation of blue honeysuckle (Lonicera edulis) / O. Ninjmaa [et al.] // Intern. J. of Research Studies in Science, Engineering a. Technology. – 2015. – Vol. 2, iss. 10. – P. 57–61.

7. Панькова, О.А. Перспективы использования биотехнологических методов в системе производства оздоровленного посадочного материала жимолости синей в Удмуртии / О.А. Панькова // Аграр. наука Евро-СевероВостока. – 2009. – №1 (12). – С. 43–47.

8. Высоцкий, В.А. Клональное микроразмножение жимолости в производственных условиях / В. А Высоцкий, В.А. Валиков // Садоводство и виноградарство. – 2014. – №6. – С. 18–23.

9. Comparative study on different methods Lonicera japonica Thunb. micropropagation and acclimatization / J.X. Hui [et al.] // J. of Medicinal Plants Research. – 2012. – Vol. 6, №27. – P. 4389–4393. https://doi.org/10.5897/jmpr011.1715

10. Palacios, N. Regeneration of Lonicera tatarica plants via adventitious organogenesis from cultured stem explants / N. Palacios, P. Christou, M.J. Leech // Plant Cell Rep. – 2002. – Vol. 20, №9. – P. 808–813. https://doi.org/10.1007/s00299-001-0415-y

11. Колбанова, Е.В. Влияние различных субстратов и поры года на адаптацию ex vitro растений-регенерантов жимолости синей (Lonicera caerulea L. var. kamtschatica) / Е.В. Колбанова // Плодоводство : сб. науч. тр. / Нац. акад. наук Беларуси, Ин-т плодоводства. – Минск, 2018. – Т. 30. – С. 159–164.

12. Isutsa, D.K. Rapid propagation of blueberry plants using ex vitro rooting and controlled acclimatization of micropropagules / D.K. Isutsa, M.P. Pritts, K.W. Mudge // HortScience. – 1994. – Vol. 29, №10. – P. 1124–1126. https://doi.org/10.21273/hortsci.29.10.1124

13. Meiners, J. Efficient in vitro regeneration for Vaccinium species / J. Meiners, M. Schwab, I. Szankowsk // Plant Cell, Tissue a. Organ Culture. – 2007. – Vol. 89, №2–3. – P. 169–176. https://doi.org/10.1007/s11240-007-9230-7

14. Adventitious shoot regeneration from leaf explants of southern highbush blueberry cultivars / C. Lui [et al.] // Plant Cell, Tissue a. Organ Culture. – 2010. – Vol. 103, N 1. – P. 137–144. https://doi.org/10.1007/s11240-010-9755-z

15. Mihaljević, S. Alanine conjugate of indole-3-butyric acid improves rooting of highbush blueberries / S. Mihaljević, B. Salopek-Sondi // Plant, Soil a. Environment. – 2012. – Vol. 58, N 5. – P. 236–241. https://doi.org/10.17221/34/2012-PSE

16. Божидай, Т.Н. Особенности размножения in vitro и укоренения ex vitro голубики сорта Northblue / Т.Н. Божидай, Н.В. Кухарчик // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. бiял. навук. – 2014. – №4. – С. 28–31.

17. Божидай, Т.Н. Ризогенез ex vitro растений-регенерантов клюквы / Т.Н. Божидай // Субтроп. и декоратив. садоводство. – 2018. – Вып. 65. – С. 105–109. https://doi.org/10.31360/2225-3068-2018-65-105-109

18. Dednath, S.C. In vitro culture of lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.): the influence of cytokinins and media types on propagation / S.C. Dednath, K.B. McRae // Small Fruits Rev. – 2001. – Vol. 1, N 3. – P. 3–19. https://doi.org/10.1300/J301v01n03_02

19. Marcotrigianol, M. A two-stage micropropagation system for cranberries / M. Marcotrigianol, S.P. McGlew // J. of the Amer. Soc. for Horticultural Science. – 1991. – Vol. 116, №5. – P. 911–916.

20. Clara, D. An efficient ex vitro rooting and acclimatization method for horticultural plant using float hydroculture / D. Clara, A. Fira, N. Joshee // HortScience. – 2013. – Vol. 48, N 9. – P. 1159–1167. https://doi.org/10.21273/hortsci.48.9.1159

21. In vitro propagation of Lonicera kamtschatica / A. Fira [et al.] // Agricultura – Ştiinţă şi Practică. – 2014. – Vol. 23, №1–2 (89–90). – P. 90–99. http://dx.doi.org/10.15835/arspa.v89i1-2.10239

22. Ярмоленко, Л.В. Особенности ризогенеза сортов малины ex vitro / Л.В. Ярмоленко, О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Плодоводство и ягодоводство России : сб. науч. работ / Всерос. селекц.-технол. ин-т садоводства и питомниководства. – М., 2017. – Т. 48, ч. 1. – С. 308–311.

23. Зайцева, Ю.Г. Укоренение и адаптация регенерантов морозоустойчивых представителей рода Rhododendron к условиям ex vitro / Ю.Г. Зайцева, Е.В. Амброс, Т.И. Новикова // Turczaninowia. – 2018. – Т. 21, №1. – С. 144–152. https://doi.org/10.14258/turczaninowia.21.1.13

24. Vasar, V. Effect of ascorbic acid and citric acid on ex vitro rooting and acclimatization of Prunus avium L. microshoots / V. Vasar // Acta Horticulturae. – 2003. – N 616. – P. 251–254. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2003.616.33

25. Borkowska, B. Morphological and physiological characteristics of micropropagated strawberry plants rooted in vitro or ex vitro / B. Borkowska // Scientia Horticulturae. – 2001. – Vol. 89, N 3. – P. 195–206. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(00)00230-2

26. Lepse, L. Micropropagation, rooting and acclimatization of blackberry ‘Agavam’ / L. Lepse, V. Laugale // Acta Horticulturae. – 2009. – N 839. – P. 43–49. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2009.839.2

27. Fira, A. New aspects regarding the micropropagation of blackberry cultivar ‘Thornless evergreen’ / A. Fira, D. Clara, C. Plopa // Bull. of Univ. of Agr. Sciences a. Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Horticulture. – 2010. – Vol. 67, N 1. – P. 106–114.

28. Fira, A. In vitro propagation of the thornless blackberry cultivar ‘Loch Ness’ / A. Fira, D. Clara, E. Rakosy-Tican // Bull. of Univ. of Agr. Sciences a. Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Horticulture. – 2011. – Vol. 68, N 1. – P. 39–46.

29. Fira, A. Direct ex vitro rooting and acclimation in blackberry cultivar ‘Loch Ness’ / A. Fira, D. Clara, L.A. Vescan // Bull. of Univ. of Agr. Sciences a. Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Horticulture. – 2012. – Vol. 69, N 1–2. – P. 247–254.

30. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiologia Plantarum. – 1962. – Vol. 15, N 3. – P. 473–497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x


Дополнительные файлы

Просмотров: 60

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1817-7204 (Print)
ISSN 1817-7239 (Online)